Monarch^® Spin RNA Cleanup Kit (10 μg)

The following reagents are supplied with this product:

NEB #	Component Name	Component #	Stored at (°C)	Amount	Concentration
NEB # Stored at (°C) T2030S 25 Component Name Component # Stored at (°C) Amount Concentration Monarch Spin Columns S1A T2037-21 25 1 x 10 columns Not Applicable Monarch® Spin Collection Tubes T2118-21 25 1 x 10 tubes Not Applicable Monarch® Buffer BX T2041-21 25 1 x 3 ml Not Applicable Monarch® Buffer WX T2042-21 25 1 x 2.5 ml Not Applicable Nuclease-free Water B1500-21 25 1 x 2.5 ml Not Applicable
NEB # Stored at (°C) T2030L 25 Component Name Component # Stored at (°C) Amount Concentration Monarch® Spin Columns S1A T2037-1 25 2 x 50 columns Not Applicable Monarch® Spin Collection Tubes T2118-1 25 2 x 50 tubes Not Applicable Monarch® Buffer BX T2041-2 25 1 x 40 ml Not Applicable Monarch® Buffer WX T2042-2 25 2 x 20 ml Not Applicable Nuclease-free Water B1500-2 25 1 x 25 ml Not Applicable

1. Monarch® Spin RNA Cleanup Kit Protocol
2. Purification of RNA from the Aqueous Phase Following TRIzol®/Chloroform Extraction using the Monarch® Spin RNA Cleanup Kits
3. Separation of Large and Small RNA into Fractions using the Monarch® Spin RNA Cleanup Kits
4. Extraction of RNA from Agarose Gels using the Monarch® Spin RNA Cleanup Kits
5. RNA Extraction from Cells Using the Monarch® Spin RNA Cleanup Kits
6. RNA Extraction from Buccal/Nasopharyngeal Swabs Using the Monarch RNA Cleanup Kits

• Avoiding Ribonuclease Contamination
• Guidelines for RNA Quantitation
• Guidelines for Working with RNA During RNA Cleanup

• A Practical Guide to Analyzing Nucleic Acid Concentration and Purity with Microvolume Spectrophotometers
• Purification of synthetic SARS-CoV-2 viral RNA from biological samples using the Monarch® Total RNA Miniprep Kit and the Monarch RNA Cleanup Kit

• A Practical Guide to Analyzing Nucleic Acid Concentration and Purity with Microvolume Spectrophotometers
• Purification of synthetic SARS-CoV-2 viral RNA from biological samples using the Monarch® Total RNA Miniprep Kit and the Monarch RNA Cleanup Kit

1. What is the composition of each buffer provided with the Monarch Spin RNA Cleanup Kits?
2. What is the maximum binding capacity of the column for RNA Cleanup Column provided with the Monarch Spin RNA Cleanup Kit?
3. What is the smallest volume of nuclease-free water that can be used for elution with the Monarch Spin Columns S1A, S2A, S2B for RNA Cleanup?
4. Can I get better recovery with the Monarch Spin RNA Cleanup Kits if I do a second elution with my eluent from the first elution?
5. What factors affect my (A260/A230) when using the Monarch Spin RNA Cleanup Kits?
6. What size RNA can be purified with the Monarch Spin RNA Cleanup Kit?
7. Can I use the Monarch Spin RNA Cleanup Kit to cleanup up my DNase I-treated RNA?
8. Do you have a protocol for separating small and large RNAs into separate fractions?
9. Can I use the Monarch Spin RNA Cleanup Kits to purify RNA from agarose gels?
10. Can I use the Monarch Spin RNA Cleanup Kits to cleanup RNA after a TRIzol®/chloroform extraction?
11. Are the Monarch Spin RNA Cleanup Kits (NEB # T2030, #T2040, #T2050) compatible with Luna RT-qPCR reagents?
12. Are the Monarch Spin RNA Cleanup Kits (NEB #T2030, #T2040, #T2050) compatible with NEBNext reagents for RNA library prep?
13. Are the columns in the Monarch Spin RNA Cleanup Kits the same as those in the Monarch Total RNA Miniprep Kit (NEB #T2010)?
14. Can I purchase Monarch buffers and columns separately?
15. Can I do an on column DNase I treatment with the columns for RNA Cleanup?
16. Can the Monarch Spin RNA Cleanup Kits (NEB #T2030, #T2040, #T2050) also be used to purify DNA?
17. Can the Monarch Spin RNA Cleanup Kits be used for RNA extraction?
18. I noticed the buffer names have changed in the RNA Cleanup Kits. Are these buffers the same formulation as before?
19. I notice that I'm applying force to fit the column into a collection tube. Should I be doing this? What collection tubes are compatible with columns?
20. I see some silica residue in my Monarch column. Is this a problem?
21. How can I assess RNA integrity and purity?

問題	原因	改善方法
RNA収量の低下	試薬の入れ間違い	プロトコールを確認し、バッファーが正しく調製されていること、バッファーおよびエタノールの添加の順序、カラムのフロースルーおよび溶出液の適切な取扱いを確認する。
	試薬の混合が不十分	RNA Cleanup Columnにサンプルを添加する前に、エタノールがRNAサンプルおよびRNA Cleanup Binding Bufferと完全に混合されていることを確認する。
	溶出が不十分	溶出に使用するヌクレアーゼフリー水がカラムの中心に直接添加され、マトリックスが完全に飽和していることを確認する。溶出液量の増加、複数の溶出およびインキュベーション時間の延長によりRNAの収量が増加する可能性があるが、サンプルが希釈され、処理時間が長くなる可能性がある。一般的なRNAサンプルについては、推奨溶出量およびインキュベーション時間で十分である。
	RNAが高度に二次構造を形成している	より小さなRNA（< 45 nt）の結合および溶出は、RNA分子の二次構造に影響を受ける可能性がある。Small RNAの収率が低い場合は、プロトコールの手順2で1容量ではなく、2容量のエタノールでサンプルを希釈することを推奨する。
精製したRNAが分解する	RNaseのコンタミネーション	RNAクリーンアップ中のRNaseのコンタミネーションを避けるため、必ず清潔なラボベンチで作業し、手袋を着用し、使い捨てのRNaseフリーピペットチップおよび遠心チューブ（キットに含まれない）を使用する。使用していないときは、全てのキット構成品をしっかりと密封する。
	RNAの不適切な保管	精製したRNAは、直ちにダウンストリームアプリケーションで使用するか、-70°Cで保管する。
A260/230比が低い	グアニジン塩のキャリーオーバー	サンプルを溶出する前に、必ず洗浄ステップを行う。カラムの先端がフロースルーに接触しないように注意する。確信が持てない場合は、遠心分離を繰り返す。コレクションチューブを再利用する際は、カラムを再度取り付ける前にチューブの縁をキムワイプで拭き、残留する洗浄バッファーを除去する。
ダウンストリームステップにおけるRNAのパフォーマンスの低下	塩および／またはエタノールのキャリーオーバー	洗浄後に残ったエタノールおよび塩は，ダウンストリームアプリケーションを阻害する可能性がある。カラムの先端がフロースルーに接触しないように注意する。疑わしい場合は、1分間再度遠心分離し、溶出したRNAに少量の塩およびエタノールがキャリーオーバーしないようにする。
	DNAのコンタミネーション	特定のアプリケーションではDNA除去が必須になることがある。RNAサンプルをDNase I（NEB #M0303）とインキュベートし、Monarch Spin RNA Cleanupプロトコールを用いてRNAをクリーンアップする。

• Troubleshooting Guide for RNA Cleanup

品質管理試験はNEB製品の新しいロットごとに実施され、指定された仕様に適合することを確認している。品質管理試験内容は製品仕様書、分析証明書、データカードまたは製品マニュアルに記載されている。NEB製品の品質に関する詳細はこちら をご覧ください。

The Specification sheet is a document that includes the storage temperature, shelf life and the specifications designated for the product. The following file naming structure is used to name these document files: [Product Number]_[Size]_[Version]

• T2030S_L_v4

The Certificate of Analysis (COA) is a signed document that includes the storage temperature, expiration date and quality controls for an individual lot. The following file naming structure is used to name these document files: [Product Number]_[Size]_[Version]_[Lot Number]

• T2030L_v1_0011806
• T2030S_v1_0011806
• T2030S_v1_10023551
• T2030L_v1_10041690
• T2030S_v1_10041689
• T2030L_v1_10023550
• T2030L_v1_10068598
• T2030S_v1_10068599
• T2030L_v2_10099678
• T2030L_v1_10059911
• T2030S_v1_10059912
• T2030S_v2_10099682
• T2030L_v3_10126366
• T2030L_v3_10143529
• T2030S_v3_10126367
• T2030L_v3_10144609
• T2030S_v3_10144710
• T2030L_v3_10144718
• T2030S_v3_10144721
• T2030L_v3_10163944
• T2030S_v3_10163947
• T2030L_v3_10197170
• T2030S_v3_10197177
• T2030L_v3_10237490
• T2030S_v3_10237538
• T2030L_v4_10255229
• T2030S_v4_10255230
• T2030L_v4_10274426
• T2030S_v4_10274427
• T2030L_v4_10281557
• T2030S_v4_10281559
• T2030L_v4_10281645
• T2030S_v4_10281646
• T2030S_v4_10295258
• T2030L_v4_10295257
• T2030L_v4_10344679
• T2030S_v4_10340875

The following is a list of Safety Data Sheet (SDS) that apply to this product to help you use it safely.

• Monarch^® Buffer BX
• Monarch^® Buffer WX
• Nuclease-free Water

製品および内容は、New England Biolabs, Inc (NEB)が所有または管理する1つまたは複数の特許、 商標 および/または著作権によって保護されている。商標記号の使用は、必ずしもその名称が読まれている国で商標登録されていることを示すものではなく、内容が最初に開発された場所を示すものである。本製品を使用することにより、購入者は特定の用途について第三者の知的財産権を追加取得する必要が生じる場合がある。詳細については、 tech.jp@neb.com .

まで電子メールでお問い合わせください。 本製品は研究目的でのみ使用できる。本製品は、ヒトまたは動物における治療または診断目的での使用を意図したものではない。

New England Biolabs (NEB)は、倫理的な科学の実践に取り組んでいる。私たちは、その答えが得られれば、私たちの生活の質および私たちの住む世界の保全に役立つ重要な疑問を投げかけることが、研究者としての私たちの仕事であると考えている。ただし、この研究は常に安全で倫理的な方法で行われるべきである。 詳細を見る.